PROPRIETĂŢILE FARMACOLOGICE ALE ALCALOIZILOR DIN ROSTOPASCĂ
PROPRIETĂŢILE FARMACOLOGICE
ALE ALCALOIZILOR
DIN ROSTOPASCĂ
Peredelcu Rodica, Gonciar
Veaceslav
1Catedra
de farmacologie şi farmacie clinică, USMF „Nicolae Testemiţanu”
Rezumat
În Chelidonium majus L. s-au izolat circa 70 de compuşi
şi 24 de macro- şi microelemente, inclusiv: alcaloizi, flavonoizi, saponine,
vitamine, minerale, acizi aromatici şi alifatici, fitosteroli, alcooli etc. O
atenţie separată prezintă alcaloizii
isochinolinici: berberina, protoberberina, coptizina, dihidrocoptizina, 8-oxicoptizina,
stilopina, corisamina, canadina. Extractele din
rostopască au fost utilizate din cele mai vechi timpuri pentru tratamentul mai multor maladii, datorită unei game largă
de proprietăţi: antimicrobiene, antiinflamatoare, imunomodulatoare, antioxidante,
hepatoprotectoare, antitumorale,
cardioprotectoare, spasmolitice, hipoglicemiante, hipolipemiante.
Summary
Pharmacological properties of alcaloids
from Chelidonium majus
In Chelidonium
majus L. were isolated about 70 compounds and 24 macro- and microelements,
including: alkaloids, flavonoids, saponins, vitamins, minerals, aromatic and
aliphatic acids, phytosterols, alcohols, etc. Separate attention is given to
isoquinoline alkaloids: berberine, protoberberine, coptisine, dihydrocoptisin,
8-oxicoptisin, stilopine, corisamine, canadine. Buttock extracts have been used
since ancient times for the treatment of many diseases due to a wide range of
properties: antimicrobial, anti-inflammatory, immunomodulatory, antioxidant,
hepatoprotective, antitumoral, cardioprotective, spasmolytic, hypoglycemic,
hypolipidemic.
Pезюме
Фармакологические свойства алкалоидов чистотела
В Chelidonium
majus L. были выделены около 70 соединений и 24 макро- и микроэлемента, в том
числе: алкалоиды, флавоноиды, сапонины, витамины, минералы, ароматические и
алифатические кислоты, фитостеролы, спирты и т. д. Отдельное
внимание привлекают
изохинолиновые
алкалоиды:
берберин, протебеберберин, коптизин, дигидрокортизин, 8-оксипитизин, стилопин,
корисамин, канадин. Экстракты чистотела использовались
с древних времен для лечения многих заболеваний из-за широкого спектра свойств:
противомикробного, противовоспалительного, антиоксидантного, иммуномодулирующего,
гепатопротекторного, противоопухолевого, кардиопротективного,
спазмолитического, гипогликемического, гиполипидемического.
Introducere. În Chelidonium majus L. s-au izolat circa 70 de compuşi şi 24 de
macro- şi microelemente, inclusiv: alcaloizi, flavonoizi, saponine, vitamine,
minerale, acizi aromatici şi alifatici, fitosteroli, alcooli etc. O atenţie
separată prezintă alcaloizii
isochinolinici care constituie 0,27-2,25% în părţile aeriene şi 3-4 % în
rădăcini. Printre derivaţii izochinolinici un grup important reprezintă
alcaloizii protoberberinici printre care
se evidenţiază: berberina, protoberberina, coptizina, dihidrocoptizina, 8-oxicoptizina, stilopina,
corisamina, canadina. În sucul părţilor aeriene de rostopască se conţin de
la 0,1% pânăa la 1,3% alcaloizi, peste 20 derivaţi de benzofenantridină şi
derivaţi printre care cei mai importanţi în raport cantitatiiv sunt
chelidonina, sangvinarina, coptizina şi cheleritrina, precum şi berberina,
protopina, homochelidonina, alocriptopina, stilopina, oxisangvinarina,
chelirubina, canadina (Maji A.K. et al., 2015, Monografia OMS, 2010, Gilca
M. et al., 2010; Mikołajczak PL et al., 2015, Monografia OMS, 2010, Meng F.C.et al., 2018; Zielinska S.et al., 2018,).
Rostopasca (Chelidonium majus) este bine
cunoscută încă din timpurile străvechi ca o plantă cu multiple efecte asupra
organismului: antimicrobian
(Fan H.et al., 2013, Wang H.et al., 2014; Liu S.et al., 2015; Han-Ming Cui et
al., 2015; Kwon OJ.et al., 2016; Li Y.et al., 2017, Zhou X.et al., 2017; Mikołajczak PL et al., 2015)
; antiinflamator (Wang H.et al., 2014; Qian X.C.et al., 2015; Han-Ming
Cui et al., 2015; Kwon OJ.et al., 2016; Chtn H.B.et al., 2017; Li Y.et al.,
2017, Zhou X.et al., 2017; Yan Y et al., 2017; Mikołajczak
PL et al., 2015; Pang R.et al., 2015) ;
antioxidant (Yokozawa T.et al., 2004; Juang HA.et al., 2009; Wang H.et al.,
2014; Han-Ming Cui et al., 2015; Maji A.K.et al., 2015; Hu Y.K.et al., 2017;
Kwon OJ.et al., 2016; Zou C.et al., 2017; Pang R.et
al., 2015); hepatoprotector ( Feng Y et
al., 2011; Fan H.et al., 2013, Qian X.C.et al., 2015; Han-Ming Cui et al.,
2015; Ye X.et al., 2009; Maji A.K.et al., 2015; Gilca M.et al., 2010; Mikołajczak PL et al., 2015);
antidiareic (Qian X.C.et al., 2015; Han-Ming Cui et al., 2015; Kwon
OJ.et al., 2016); antihipertensiv (Qian
X.C.et al., 2015; Han-Ming Cui et al., 2015; Li Y.et al., 2017); cardioprotector
(Yan Y et al., 2017; Zhou X.et al., 2017;); antitumoral (Han-Ming Cui et al., 2015; Kwon
OJ.et al., 2016; Li Y.et al., 2017; Mikołajczak PL et
al., 2015); hipoglicemiant (Fan
H.et al., 2013, Wang H.et al., 2014; Liu S.et al., 2015; Han-Ming Cui et al.,
2015; Kwon OJ.et al., 2016; Li Y.et al., 2017; Pang
R.et al., 2015); hipolipemiant şi
antiaterosclerotic (Fan H.et al., 2013, Wang H.et al., 2014; Liu S.et al.,
2015; Han-Ming Cui et al., 2015; Kwon OJ.et al., 2016; Yan Y et al., 2017; Pang R.et al., 2015);
Alcaloizii
din rostopască sunt derivaţi benzil tetragidroizochinolină, dar care au grupe
de substituţie variate în poziţiile cheie şi, respectiv, afinitate şi diferenţe
în activitatea farmacologică. Analiza structurală a arătat că berberina şi
coptizina au câte o grupare metilendioxi în poziţiile C2 şi C3 ce diferă de
alţi alcaloizi. La substituirea hrupelor metilendioxi s-a observat o creştere a
activităţii antibacteriene şi antifungice a alcaloizilor. Dacă aceste grupe au fost substituite cu cele
metoxil s-a majorat toxicitatea. S-a demonstrat că prezenţa grupei metiledioxi
joacă un rol important în generarea glutationului redus (GSH) în mitocondriile
hepatocitelor cu un efect benefic în steatoza hepatică. S-a constatat că
coptizina mai are grupe metilendioxi şi în poziţiile C9 şi C10, în timp ce la
berberină este grupa metoxil (Fan H.et val., 2013).
Proprietăţile hepatotrope
Acţiunea hepatoprotectoare a
Chelidonium majus a fost demontrată pentru alcaloizii chelidonina, dberberina,
protopina. O influenţă benefică asupra funcţiilor ficatului ar avea şi
derivaţii izochinolinic cu efect antioxidant, coleretic, antiinflamator şi
imunomodulator (coptizina, berberina, protopina, cheleritrina, sanguinarina,a
cidul chelidonic.). Studiile exeprimentale au demonstrat că extractul din
rostopască nu alterează în normă funcţiile ficatului, dar extractul şi
alcaloizii pot preveni leziunile hepatice induse de CCl4,
paracetamol prin diminuarea activităţii enzimelor (AlAT, AsAT, FA) şi nivelului
bilirubinei. Un rol important prezintă efectul antioxidant deoarece în
patologia hepatică este demonstrată acţiunea negativă asupra hepatocitelor a
stresului oxidativ. S-a constatat că efectul antioxidant este mai manifest la
extractul din rostopască ce conţine un sumar de alcaloizi. Acest efect este
cauzat de captarea radicalilor liberi (hidroxil, peroxil, hipoclorid),
anionilor (superoxid, singlet), precum şi prin creşterea activităţii enzimelor
antioxidante (cataclaza, superoxid dismutaza MnSOD) (Ye X.et al , 2009; Gilca M.et al., 2010; Maji A.K.et al., 2015).
De asemenea s-a determinat că acţiunea
hepatoprotectoare poate fi determinată de efectul antioxidant al coptizinei.
Acesta este cauzat, la concentraţii de 0,8 şin 10 mkg/ml, de micşorarea
producerii de specii reactive ale oxigenului, inhibarea peroxidării lipidelor,
creşterii sintezei de glutation şi activităţii enzimelor antioxidante (SOD,
GP-azei) (Hu Y.R.et al., 2017).
Gîlca M şi coaut. (2010) au demonstrat
în studii experimentale că extractul etanolic
manifestă efect hepatoprotector prin reducerea numărului de hepatocite
necrotizate, modificărilor fibrotice şi
activităţii transaminazelor şi nivelului bilirubinei în hepatita toxică indusă
prin CCl4..
La şobolanii cu hepatită toxică,
indusă prin tetraclorura de carbon (CCl4) extractul din rostopască
în dozele de 400, 600 şi 800 mg/kg a manifestat efcete protectoare prin
micşorarea activităţii AlAT şi AsAT şi de a creşte pe cea a superoxid dismitazei.
S-a concluzionat, că la baza efectului hepatoprotector stau prorietăţile
antioxidante ale extractului (Ye X.et al., 2009; Feng Y et al., 2011).
Extractul din rostopască, administrat intragastral
în dozele de 12,5, 62,5 şi 125 mg/kg de 2 ori pe săptămână timp de 3 săptămâni,
diminua efectiv acţiunea hepatotoxică a CCl4 prin micşorarea
activităţii AlAT, AsAT, fosfatazei alcaline, LDH şi nivelului bilirubinei.
Concomitent s-a constatat o restabilire a nivelului colesterolului, micşorat
iniţial de acţiunea hepatotoxicului. La examinarea histologică s-a determinat
micşorarea numărului hepatocitelor
necrotice (Monografia OMS, 2010).
Cercetările pe ficat izolat perfuzat
au demonstrat, că extractul alcoolic din rostopască cu un conţinut de 1,6% alcaloizi, a crescut de 2
ori eliminarea bilei (Monografia OMS,
2010).
Coptisina, la administrarea
preventivă timp de 7 zile, a ameliorat leziunea hepatică indusă la şoareci prin
lipopolizaharide şi D-galactozamină (LPS/D-GalN) prin scăderea nivelurilor AlAT
şi AsAT, creșterea valorilor hepatice ale glutationului (GSH) şi superoxidreductazei
(SOD) şi menţinerea morfologiei hepatocitelor. Studiile in
vitro au arătat că tratamentul cu coptizină a promovat în mod evident
apoptoza celulelor HepG2. Astfel, coptizina a demonstrat un potențial efect protector asupra
leziunilor hepatice (Chai FN et al., 2018)..
Extractul
etanolic din Chelidonium majus a
demonstrat capacitatea de a reduce
hepatotoxicitatea indusă de tetraclorură de carbon prin diminuarea
acumulării lipidelor, dezvoltării necrozei celulare şi absenţa fibrozei
(Zielinska S.et al., 2018).
Tinctura
de Chelidonium majus, sun formă de
produs homeopatic, s-a dovedit eficientă
împotriva hepatoxicităţii, induse de cadmiu, în celulele HepG2 şi în modelele hepatocitelor
primare de şobolan, cu un efcet similar cu
Silybum marianum. Mecanismele presupuse ale activităţii hepatoprotectoare
au fost asociate cu ameliorarea stresului oxidativ (inhibarea peroxidării
lipidelor, acumulării speciilor intracelulare reactive de oxigen, majorarea
nivelul glutatiunii redus), precum şi diminuarea simptomelor apoptozei
(fragmentarea nucleului, eliberarea citocromului C, activarea caspazei 3).
Hepatotoxicitatea cauzată de cadmiu a fost, de asemenea, ameliorată in vivo la şoareci şi in vitro în culturi de hepatocite. S-a
constatat ameliorarea tabloului
histopatologic a ficatului,
restabilirea activităţii AlATT,
AsAT şi fosfatazei alcaline la nivelele animalelor intacte. Mecanismele
presupuse ale hepatoprotecţiei se referă la atenuarea stresului oxidativ
(diminuarea peroxidării lipidelor), îmbunătăţirea stării antioxidante
(majorarea nivelul glutationului redus şi activităţii seperoxiddismutazei şi
catalazei) şi ameliorarea markerilor de moarte a celulelor şi inflamaţiei (nivel scăzut al proteinei
TNF-α, IL-6 , NFκB, p65, cas-3, iNOS) (Zielinska S.et al., 2018).
Un
şir de studii clinice cu produse care conţine extract de Chelidonium. majus la pacienţii cu tulburări ale tractului biliar
şi ale vezicii biliare (colelitiază, colangită/colecistită, sindrom
postcoecistectomie, hepatită toxică
alcoolică) au sugeret despre o ameliorare semnificativă a parametrilor
clinici, instrumentali şi de laborator
(bilirubină, transaminaze, tabloul sângelui) (Zielinska S.et al., 2018).
Analiza datelor literaturii permit de
a conchide că extractele şi alclaoizii din Chelidonium majus exercită acţiune
hepatoprotectoare prin: micşorarea
producerii de specii reactive ale oxigenului; inhibarea peroxidării lipidelor;
creşterea sintezei de glutation şi activităţii enzimelor antioxidante;
diminuarea procesului inflamator datorită micşorării producerii citochinelor
proinflamatorii; corecţia dereglărilor metabolismului lipidic.
Proprietăţile
antiinflamatoare
Coptidis chinesis se utilizează de secole în tratamentul maladiilor
inflamatoare. Cercetările experimentale au constatat că coptizina a inhibat
marcat producerea de monoxid de azot prin diminuarea expresiei de nitrixoxid
sintazeo inductibile în macrofagele stimulate prin lipopolizaharide. Concomitent
alcaloidul a inhibat producerea de citochine proinflamatoare IL-1 beta şi IL-6
prin suprimarea expresiei ARNm. Coptizina a redus edemul lăbuţei la şobolani
indusă prin caragenana, precum şi a
micşorat formarea TNF-alfa şi monoxidului de azot în ţesutul inflamat (Maji
A.K.et al., 2015; Wu J.et al., 2016).
La şobolanii cu ischemie şi reperfuzie
miocardică coptizina a atenuat producerea de citochine proinflamatoare (IL-1
beta, IL-6, TNF-alfa) în miocard şi suprimarea căii Rho/Rock (Guo J.et al.,
2013).
Coptizina a exercitat o supresie dependentă de doză a
edemului urechii indusă prin xilen, a atenuat semnificativ dereglarea
permeabilităţii vasculare cauzate de acidul actic şi edemul lăbuţei provocate
de caragenan. Alcaloidul a diminuat esenţial producerea de IL-1 beta, IL-6,
PGE2 şi TNF-alfa indusă de caragenan. Efectul antiinflamator este cauzat de
inhibarea căilor de semnalizare prin factorul nuclear (NF-kB) şi a protein
kinazei nitrogen activate (Chen HB.et al., 2017).
La şobolanii cu esofagită de reflux
alcaloizii din Rhizoma Coptidis,
inclusiv coptizina, au manifestat acţiune antiinflamatoare prin suprimarea
activităţii factorului nuclear (NF-kB) şi creşterea activităţii enzimelor oxidative (Kwon OJ. Et
al., 2016).
În
studiile in vitro extractul din rostopască, ce conţinea 0,68% alcaloizi, a
diminuat activitate 5-lipooxigenazei, iar sancvinarina şi cheleritrina au
inhibat şi activitate 12-lipooxigenazei (Monografia OMS, 2010).
În studiile experimentale s-a constatat că extractul metanolic din Chelidonium majus inhibă progresia
artritei induse de colagen la şoricei. Acest efect al extratului este
determinat de diminuarea producerii de TNF-alfa, Il-6, INF-gama, B-celule şi
majorarea raportului CD4+CD25+ T-celule reglatoare. Concomitent s-a micşorat nivelul
imunoglobulinelor G şi M (Gilca M.et al., 2010; Maji A.et al., 2015; Mikołajczak PL et al., 2015;).
S-a constatat că în cazul
obezităţii prin consumul de grăsimi şi calorii se asociază cu un grad variat de
inflamaţie. Rezultatele au arătat că greutatea corporală, nivelul lipidelor
plasmatice, colesterolului total, trigliceridelor, lipoproteinelor de densitate
mică, lipoproteinelor de densitate foarte mică, ApoB şi conţinutul citokinelor
proinflamatoare TNF-a, IL-6 şi lipopolizaharide (LPS) au fost modificate
semnificativ la animalel cu dietă bogată în grăsimi şi colesterol. Coptisina în
concentraţii de la 60 până la 700 mg/l a determinat o majorare dependentă de
doză a creşterii Enterobacter cloacae, resposabil de inducerea obezităţii şi
rezistenţei la insulină. Coptisina a demonstrat capacitatea de reducere a
conţinutului de lipopolizaharide în inflamaţie. Investigaţiile au arătat că
coptisina a suprimat tolreceptorii (TLR-4) în ţesutul adipos visceral şi a
redus expresia CD14 în ficatul animalelor. Aceste date au sugerat ideea că
coptisina poate fi utilă pentru prevenirea bolilor legate de obezitate prin
intermediul căii de semnalizare mediate de LPS / TLR-4.(Zou ZY et al., 2015,
Meng FC et al., 2018).
Coptisina poate atenua
inflamaţia cauzată de obezitate şi stresul oxidaniv cu efecte benefice pentru
tratamentul aterosclerozei datorită acţiunii hipolipidemiante şi
antiinflamatoare. În studiile experimentale tratamentul cu coptisină a scăzut
nivelul seric al parametrilor metabolismului lipidic (colesterolului total,
trigliceidelor şi colesterolului lipoproteinelor cu densitate mică) şi al
medfiatorilor inflamaţiei (IL-6, IL-1β şi TNF-a); precum şi conţinutul ARNm al NF-κBp65, VCAM-1, ICAM-1, IL-6 și IL-1β în
aorta şi ficat. Coptisina a micşorat semnificativ placa aterosclerotică atât
prin efect antiinflamator, cât şi prin reducerea lipidelor. Efectul
antiinflamator al coptisinei se realizează prin activarea inhibitoare a căilor
de semnalizare MAPK şi a translocării nucleare NF-kB. (Feng M.et al., 2017, Meng
FC et al., 2018).
Coptisina fost utilizat pe scară largă
pentru remedierea tulburărilor inflamatorii. În studiu au fost investigate
proprietăţile antiinflamatoare ale bazei libere de coptisin
(8-hidroxi-7,8-dihidrocoptizină) pe modele de edemul urechii indus de xilen,
permeabilitatea vasculară indusă de acid acetic şi de edemul labei indus de
carrageenan. Rezultatele au arătat că coptizina a exercitat o supresie
dependentă de doză pe edemul urechii indusă de xilen, a atenuat în mod
semnificativ agravarea permeabilității
vasculare cauzată de acidul acetic şi edemul labei indus de caragenan.
Alcaloidul a suprimat în mod semnificativ producerea de interleukină-1 beta (IL-1 β),
interleukină-6 (IL-6), prostaglandină E2 (PGE2) şi factor de necroză tumorală (TNF-α) după
tratamentul cu caragenină. Coptizina a inhibat calea protein kinazei activate
de mitogen (MAPK) prin blocarea fosforilării p-p38 (fosfop-p38 protein
kinazelor activate) şi p-JNK (kinaza fosfo-c-jun N-terminală). Astfel,
coptizina previne eficient inflamaţia, cel puţin parţial, prin inhibarea căilor
NF-kB şi MAPK (Chin HB et al., 2017, Meng FC et al.,
2018).).
Fracţia alcaloizilor din Chelidonium majus a fost eficientă faţă de edemul lăbuţei de
şobolan indus de caragenină. Extractele ce conţin preponderent coptizină au
fost eficace în testul cu plăci fierbinţi ce a demonstrat proprietăţile
antinociceptive datorită acţiunii supramedulare (Zielinska S.et al., 2018).
Extractul
hidroetanolic din părțile aeriene ale Chelidonium majus
în doze de 200 mg şi 400 mg/kg, la şoarecii cu dermatita atopică indusă de DNCB
(1-cloro-2,4-dinitrobenzen), atenua pruritul şi leziunea pielii, diminua
nivelele serice ale IL-4 şi TNF-alfa, normaliza conţinutul IgE (Zielinska
S.et al., 2018).
Extractul metanol-hidric din Chelidonium majus în doze orale de 40 şi 400 mg/kg, la şoarecii cu
artrită indusă de colagen, a suprimat progresia afectării articulaţiilor şi
migrarea celulelor în ganglionii limfatici, splină, timus şi lichidul sinovial,
dar cel mai marcat efect a fost în ganglionii limfatici și articulaţii. Concomitent
s-a constatat o scădere nesemnificativă a celulelor CD4 +, CD8 + şi CD3e +, dar
marcată a celulelor B CD19 +. Paralel,
s-a determinat o majorarea semnificativă a
numărul celulelor T CD4 + CD25 + de reglementare, ceea ce sugerează
despre mobilizarea răspunsului adaptiv al sistemului imun pentru a contracara
şi a echilibra procesele inflamatorii excesive. S-a observat supresia
mediatorilor de inflamație, cum ar fi IL-6, TNFa, IFNgama, precum şi nivelul scăzut al IgG şi IgM,
îndeosebi după tratamentul cu doză de 400 mg/kg
(Zielinska S.et al., 2018).
În baza analizei datelor prezentate
putem conchide că activitatea antiinflamatoare a extractului din Chelidonium
majus şi a alcaloizilor constituenţi, inclusiv coptizina, se poate realiza
prin: atenuarea producerii de prostaglandine şi citochine proinflamatoare (PGE2,
IL-1 beta, IL-6, TNF-alfa); inhibarea căii lipooxigenazice a acidului
arahidonic; suprimarea activităţii factorului nuclear (NF-kB) şi căilor de semnalizare
prin factorul nuclear; modularea imunităţii umorale şi celulare; activitatea
antioxidantă.
Proprietăţile
imunotrope
Studiile in vitro pe macrofage de şoricei au demonstrat capacitatea
alcaloizilor din rostopască, inclusiv a coptizinei, de a majora activitatea
macrofagelor periotneale prin modificarea conformaţională a proteinelor
membranare ale acestora şi îmbinătăţi activitatea respiratorie şi fagocitară a
macrofagelor (Gilca M.et al., 2010; Maji A.K.et al., 2015; Zhou X.et al.,
2015).
În studiile clinice s-a constatat că
tinctura din Chelidonium majus a influenţat
rezistenţa nespecfică, imunitatea umorală şi celulară şi a diminuat
numărul de recurenţe ale tosilitei la copii (Gilca M.et al., 2010).
Rhizoma Coptidis poate spori imunitatea prin activarea
celulelor MOLT-4 şi a celulelor T helper de tip I, crescând producţia de
citokine T de tip T helper, inclusiv IFN-y, IL-1 β, IL-2 şi IL-6, precum şi prin activarea căile de semnalizare ale protein
kinazei activate de mitogen (MAPK) (Meng FC et al., 2018).
Proprietăţile
antioxidante
În studiile in vitro s-a demonstrat că extractul din Chelidonium majus manifestă activitate antioxidantă, care era
determinată de totalul de alcaloizi.
Administrarea internă a extractului din diferite părţi ale plantei s-a soldat
cu captarea radicalilor liberi (hidroxil, peroxil), anionilor hipoclorit şi
superoxid, oxigenului singlet şi peroxidului de hidrogen. Acţiunea antioxidantă
este mediată de activarea factorului de transcirpţie cu reglarea activităţii
enzimelor antioxidante majore – catalaza şi mangan superoxiddismutaza (Maji
A.K. et al., 2015).
Extractul din rădăcini de rostopască in vitro a demonstrat capacitatea de a capta mai marcat
peroxinitritul (ONOO-) decât predecesorii săi oxidul nitric
şianionul superoxid. În cercetările in
vivo extractul în doze de 50 şi 100 mg/kg/zi timp de 30 zile a inhibat mai
marcat generarea de peroxinitrit decât NO şi superoxid anion. S-a sugerat că
are loc captarea directă a peroxinitritului. Concomitent extractul a atenuat diminuarea
activităţii enzimelor antioxidante – superoxiddismutazei, catalazei, glutation
peroxidazei. La analiza fracţiilor extractului s-a determinat că cea mai activă
a fost cea a alcaloizilor constituită din berberină, palmatină şi coptizină în
vederea neutralizării peroxinitritului (Yokozawa T.et al., 2004).
Extractul din Rhizoma Coptidis şi
alcaloizii puri (berberina, palmatina, jateorhizina, epiberberina, coptizina şi
groenlandicina) au manifestat proprietăţi antioxidante prin inhibarea
peroxinitritului şi a speciilor reactive ale oxigenului la şobolani (Juang HA
et al., 2009).
Studiile in vitro au relevat că
extractul din rostopască şi alcaloizii separaţi au inhibat marcat
glutation-S-transferaza, acetilcolinesteraza şi mai puţin carboxilesteraza. Datele
respective au fost confirmate şi in vivo în cadrul studiului efectului
insecticid al acaloizilor asupra larvelor de Lymantria dispar, fapt ce a
demonstrat despre afectarea activităţii şi transcripţiei ARNm a enzimelor
detoxifiante şi de protecţie (Zou C.et al., 2017).
Coptizina, în concentraţii de 10 μg/ml
a redus semnificativ producerea de specii reactive ale oxigenului, peroxidării
lipidelor şi moartea celulară în stresul oxidativ experimental. Concomitent
alcaloidul în concentraţii de 0,8 μg/ml a diminuat nivelul speciilor reactive
ale oxigenului, a crescut conţinuutl glutationului şi activitatea
superoxidismutazei şi glutation peroxidazei. S-a concluzionat că coptizina
stimulează enzimele antioxidante de faza II NADPH chinon oxidaza 1 prin activarea
căilor factorului 2 asociat cu factorul nuclear, proteinkinazei B şi jun
kinazei terminale (Hu Y.R.et al., 2017).
Pe model de esofagită de reflux s-a
constatat că alcaloizii din rostopască, incluisv coptizina, au redus stresul
oxidativ prin micşorarea formării speciilor reactive ale oxigenului şi
crelterea activităţii enzimelor antioxidante (Kwon OJ et al., 2016).
Rhizoma Coptidis, la şobolanii cu diabet experimental indus prin
streptozocină, a contribuit la limitarea
stresului oxidativ prin scăderea expresiei monoxidului de azot şi dialdehidei
malonice şi majorarea expresiei superoxid dismutazei şi glutationperoxidazei
cu creşterea semnificativă a activităţii
superoxid dismutazei şi a conținutului de glutation, diminuarea nivelului speciilor reactive de oxigen
(Li JC et al., 2013; Chen G.et al., 2017).
Heo J.I. şi coaut (2013) au relatat că
extractul din Chelidonium majus manifestă proprietăţi antioxidante prin
reglarea unui subgrup de proteine (FOXO3a) implicate într-un şir de funcţii
biologice precum controlul ciclului celular, apoptoza, refacerea ADN şi
detoxicare speciilor reactive ale oxigenului prin reglarea genelor. Autorii
au constatat că extractul din
Chelidonium majus creşte activitate FOXO3a fie prin fosforilare sau acetilare,
fie prin amplificarea activităţii translaţionale a genelor enzimelor antioxidante. Aceste mecanisme sunt
responsabile de neutralizarea speciilor reactive ale oxigenului.
Rhizoma
Coptidis a manifestat un efect neuroprotector împotriva stresului oxidativ în
celulele neuroblastomului uman şi în modelele de boală Parkinson. Extractele
metanollc şi apos au prezentat o activitate inhibitoare a acetilcolinesterazei
la concentraţii de 0,031 μg/ml şi 2,5 μg/ml respectiv.
În
studiile experimentale s-a constatat că
din extractul 70%d e etanol din Rhizoma Coptidis a manifestat un efect
analgezic prin inhibarea eliberării serotoninei şi a exprimării
colecistocininelor în colonul distali al şobolanilor. După tratamentul cu un
extract apos de s-a redus conţinutul dialdehidei malonice şi s-a majorat
activitatea superoxid dismutază în piele
şi ser la şobolanii cu leziuni cutanate induse de radiaţii (Meng FC et al.,
2018).
Tinctura de Chelidonium majus,
sun formă de produs homeopatic, s-a
dovedit eficientă împotriva hepatoxicităţii, induse de cadmiu, în celulele
HepG2 şi în modelele hepatocitelor primare de şobolan, cu un efcet similar cu Silybum marianum. Mecanismele presupuse
ale activităţii hepatoprotectoare au fost asociate cu ameliorarea stresului
oxidativ (inhibarea peroxidării lipidelor, acumulării speciilor intracelulare
reactive de oxigen, majorarea nivelul glutatiunii redus). Hepatotoxicitatea
cauzată de cadmiu a fost, de asemenea, ameliorată in vivo la şoareci şi in
vitro în culturi de hepatocite. S-a constatat ameliorarea tabloului histopatologic a
ficatului, restabilirea activităţii AlATT, AsAT şi fosfatazei
alcaline la nivelele animalelor intacte. Mecanismele presupuse ale
hepatoprotecţiei se referă la atenuarea stresului oxidativ (diminuarea peroxidării
lipidelor) şi îmbunătăţirea stării antioxidante (majorarea nivelul
glutationului redus şi activităţii seperoxiddismutazei şi catalazei) (Zielinska
S.et al., 2018).
În
baza analizei datelor prezentate putem conchide că activitatea antioxidantă a
extractului din rostopască şi a alcaloizilor constituenţi, inclusiv coptizina,
se poate realiza prin: captarea radicalilor liberi ai oxigenului şi azotului;
majorarea activităţii şi expresiei enzimelor antioxidante; reglarea factorilor
de transcripţie responsabili de neutralizarea stresului oxidativ; refacerea
rezervelor du substraturi antioxidante.
Concluzii.
1.
Extractele şi alclaoizii din Chelidonium
majus exercită acţiune hepatoprotectoare prin:
micşorarea producerii de specii reactive ale oxigenului; inhibarea
peroxidării lipidelor; creşterea sintezei de glutation şi activităţii enzimelor
antioxidante; diminuarea procesului inflamator datorită micşorării producerii
citochinelor proinflamatorii; corecţia dereglărilor metabolismului lipidic.
2.
Activitatea
antiinflamatoare a extractului din Chelidonium majus şi a alcaloizilor
constituenţi, inclusiv a coptizinei, se poate realiza prin: atenuarea
producerii de prostaglandine şi citochine proinflamatoare (PGE2,
IL-1 beta, IL-6, TNF-alfa); inhibarea căii lipooxigenazice a acidului
arahidonic; suprimarea activităţii factorului nuclear (NF-kB) şi căilor de
semnalizare prin factorul nuclear; modularea imunităţii umorale şi celulare;
activitatea antioxidantă.
3.
Acţiunea antioxidantă a coptizinei,
posibil, este determinată de: captarea radicalilor liberi ai oxigenului şi
azotului; majorarea activităţii şi expresiei enzimelor antioxidante; reglarea
factorilor de transcripţie responsabili de neutralizarea stresului oxidativ;
refacerea rezervelor du substraturi antioxidante.
Bibliografia
1.
Cao Y.et al. Hypocholesterolemia
of Rhizoma Coptidis alkaloids is related to the bile acid by
up-regulated CYP7A1 in hyperlipidemic rats. Phytomedicine. 2012 Jun 15;19(8-9):686-92.
2.
Chen B.et al. [Regulatory effect of coptisine on key genes involved in cholesterol
metabolism]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2015 Apr;40(8):1548-53.
3.
Chen G. et al.
Jia-Wei-Jiao-Tai-Wan ameliorates type 2 diabetes by
improving β cell
function and reducing insulin resistance in diabetic rats. BMC Complement Altern Med. 2017 Nov 29;17(1):507.
4.
Chen HB et al. Anti-inflammatory
activity of coptisine free
base in mice through inhibition of NF-κB and MAPK signaling pathways. Eur J
Pharmacol. 2017 Sep
15;811:222-231.
5. Chen K [Evaluation on intestinal absorption
of alkaloids extracted by different methods from Rhizoma Coptidis-Rheum
rhabarum herbal pair via everted gut sacs]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2015 Dec;40(24):4853-9.
6.
Chen HY et al. Cytotoxicity
and antihyperglycemic effect of minor constituents from Rhizoma Coptis in HepG2
cells. Fitoterapia. 2012 Jan;83(1):67-73.
7.
Choi JS et al. Coptis chinensis
alkaloids exert anti-adipogenic activity on 3T3-L1 adipocytes by downregulating
C/EBP-α and
PPAR-γ. Fitoterapia. 2014 Oct;98:199-208.
8.
Choi JS et al. Protein
tyrosine phosphatase 1B inhibitory activity of alkaloids from Rhizoma Coptidis and their molecular docking studies. J
Ethnopharmacol. 2015 Aug
2;171:28-36.
9.
Cui HM et al. Poor
permeability and absorption affect the activity of four alkaloids from Coptis. Mol Med Rep. 2015 Nov;12(5):7160-8.
10.
Fan H. et al. In Vitro Screening for Antihepatic Steatosis
Active Components within Coptidis Rhizoma Alkaloids Extract Using Liver Cell
Extraction with HPLC Analysis and a Free Fatty Acid-Induced Hepatic Steatosis
HepG2 Cell Assay. Evid Based Complement Alternat Med. 2013; 2013: 459390.
11. Han YL et al. In vitro
inhibition of Huanglian [Rhizoma coptidis (L.)] and its six active alkaloids on
six cytochrome P450 isoforms in human liver microsomes.
Phytother
Res. 2011
Nov;25(11):1660-5.
12. He K.et al. Hypolipidemic
Effects of Alkaloids from Rhizoma Coptidis in Diet-Induced Hyperlipidemic
Hamsters. Planta Med. 2016 May;82(8):690-7
13. He K. et al. The safety
and anti-hypercholesterolemic effect of coptisine in
Syrian golden hamsters. Lipids.
2015 February 50 (2): 185-94.
14. Hu YR Activation of
Akt and JNK/Nrf2/NQO1 pathway contributes to the protective effect of coptisine
against AAPH-induced oxidative stress. Biomed Pharmacother. 2017 Jan;85:313-322.
15. Gupta S. et al. Alkaloids as
aldose reductase inhibitors, with special reference to berberine. J Altern Complement Med. 2014 Mar;20(3):195-205
16. Guo J.et al. Coptisine protects rat
heart against myocardial ischemia/reperfusion injury by suppressing myocardial
apoptosis and inflammation. Atherosclerosis. 2013 Dec;231(2):384-91.
17. Jung HA et al. Inhibitory
activities of the alkaloids from Coptidis Rhizoma against aldose reductase. Arch Pharm
Res. 2008
Nov;31(11):1405-12.
18. Kim EK et al. Coptidis rhizoma extract
protects against cytokine-induced death of pancreatic beta-cells through
suppression of NF-kappaB activation. Exp Mol Med. 2007 Apr 30;39(2):149-59.
19. Kou S. et al. Synergetic
cholesterol-lowering effects of main alkaloids from Rhizoma Coptidis in HepG2
cells and hypercholesterolemia hamsters. Life Sci. 2016 Apr 15;151:50-60.
20. Kwon KB et al. Protective effect of Coptidis Rhizoma on S-nitroso-N-acetylpenicillamine (SNAP)-induced apoptosis and necrosis in pancreatic RINm5F cells. Life Sci. 2005 Jan 7;76(8):917-29.
21.
Kwon OJ et al. Antioxidant and Anti-Inflammatory
Effects of Rhei Rhizoma and Coptidis Rhizoma Mixture on Reflux Esophagitis in
Rats. Evid Based Complement Alternat Med. 2016; 2016: 2052180.
22. Li JC et al. A traditional
Chinese medicine JiuHuangLian (Rhizoma coptidis steamed with rice wine) reduces
oxidative stress injury in type 2 diabetic rats. Food Chem Toxicol. 2013 Sep;59:222-9.
23. Li Y.et al. Comparative
Metabolism Study of Five Protoberberine Alkaloids in Liver Microsomes from Rat,
Rhesus Monkey, and Human. Planta Med. 2017 Nov;83(16):1281-1288.
24. Li J.et al. [Pharmacodyamic material basis of rhizoma
coptidis on insulin resistance]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2010 Jul;35(14):1855-8.
25. Ma B.L.et al.. Identification of the toxic constituents in
Rhizoma Coptidis. J
Ethnopharmacol. 2010; Mar
24;128(2):357-64.
26. Ma B.L., Ma Y.M..Pharmacokinetic properties, potential
herb-drug interactions and acute toxicity of
oral Rhizoma coptidis
alkaloids. Expert Opin Drug Metab Toxicol. 2013; Jan;9(1):51-61.
27. Ma B.L.et al.
Naturally occurring proteinaceous
nanoparticles in Coptidis Rhizoma extract act as concentration-dependent
carriers that facilitate berberine absorption. Sci Rep. 2016; Jan 29;6:20110.
28. Ma H.et al. Antihyperglycemia and
Antihyperlipidemia Effect of Protoberberine Alkaloids From Rhizoma Coptidis in
HepG2 Cell and Diabetic KK-Ay Mice. Drug Dev Res. 2016 Jun;77(4):163-70.
29. Maji
A.L., Pratim B. Chelidonium majus L.
(Greater celandine) – A Review on its Phuytochemical and therapeutic
Proprietives. International journal of Herbal medicine. 2015; 3(1): 10-27.
30. Meng
F.C. et al. Coptidis rhizoma and its main bioactive
components: recent advances in chemical investigation, quality evaluation and
pharmacological activity. Chin Med.
2018; 13: 13.
31.
Mikołajczak
PL et al. Evaluation of
anti-inflammatory and analgesic activities of extracts from herb of Chelidonium majus L. Cent Eur J
Immunol. 2015; 40(4): 400–410.
32. Zhou H.et al. Screening for
potential -α -Glucosidase
inhibitors in Coptis chinensis franch extract using ultrafiltration LC-ESI-MSn.
Pak J Pharm Sci. 2014 Nov;27(6 Suppl):2007-12.
33. Qian XC et al. Simultaneous
determination of ten alkaloids of crude and wine-processed Rhizoma Coptidis
aqueous extracts in rat plasma by UHPLC-ESI-MS/MS and its application to a comparative
pharmacokinetic study. J Pharm Biomed Anal. 2015 Feb;105:64-73.
34. Qu Q.et al. Inhibitory
effects of phytochemicals on metabolic capabilities of CYP2D6(*)1 and
CYP2D6(*)10 using cell-based models in vitro. Acta Pharmacol
Sin. 2014
May;35(5):685-96.
35. Pang R.et al.
Effect of Rhizoma coptidis (Huang Lian) on Treating Diabetes
MellitusEvid Based Complement Alternat Med. 2015; 2015: 921416.
36. Rao PC Coptisine-induced
cell cycle arrest at G2/M phase and reactive oxygen species-dependent
mitochondria-mediated apoptosis in non-small-cell lung cancer A549 cells. Tumour Biol. 2017 Mar;39(3):1010428317694565.
37.
Songcan L. et al. Metabolic
Interaction of the Active Constituents of Coptis chinensis in Human Liver Microsomes Evid Based Complement Alternat Med. 2015; 2015: 802903
38. Su J.et al. Pharmacokinetics and Brain
Distribution and Metabolite Identification of Coptisine, a Protoberberine Alkaloid with Therapeutic
Potential for CNS Disorders, in Rats. Biol Pharm Bull. 2015;38(10):1518-28.
39.
Tan HL et al. Rhizoma Coptidis: A Potential Cardiovascular
Protective Agent Front Pharmacol. 2016; 7: 362.
40. Zhang X.et al. Intestinal
absorption mechanisms of berberine, palmatine, jateorhizine, and coptisine:
involvement of P-glycoprotein. Xenobiotica. 2011
Apr;41(4):290-6.
41. Zhang ZH [Advance in studies on
pharmacological activity of coptisine hydrochloride].
Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2013 Sep;38(17):2750-4.
42. Zielińska S.et al.Greater Celandine's Ups and Downs−21 Centuries
of Medicinal Uses of Chelidonium majus From the Viewpoint of Today's
Pharmacology. Front Pharmacol. 2018; 9: 299.
43. Zhou X [Effects of alkaloids from Coptidis
Rhizoma on mouse peritoneal macrophages in vitro]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2015 Dec;40(23):4660-6.
44. Zou C.et al. Larvicidal
activity and insecticidal mechanism of Chelidonium majus on Lymantria dispar. Pestic Biochem Physiol. 2017 Oct;142:123-132.
45. Yan Y Pharmacokinetics
and tissue distribution of coptisine in rats after oral administration by
liquid chromatography-mass spectrometry. Biomed
Chromatogr. 2017
Jul;31(7).
46. Ye X.et al. Hepatoprotective effects of
Coptidis rhizoma aqueous extract on carbon tetrachloride-induced acute liver
hepatotoxicity in rats. J
Ethnopharmacol. 2009 Jul
6;124(1):130-6.
47. Yi J. et al. Safety evaluation of main alkaloids from
Rhizoma Coptidis.. J Ethnopharmacol. 2013; Jan 9;145(1):303-10.
48. Yokozawa T.et al. Coptidis
Rhizoma: protective effects against peroxynitrite-induced oxidative damage and
elucidation of its active components. J Pharm Pharmacol. 2004 Apr;56(4):547-56.
49. Yue SJ et al. System Pharmacology-Based Dissection
of the Synergistic Mechanism of Huangqi and Huanglian for Diabetes
Mellitus. Front
Pharmacol. 2017 Oct
5;8:694.
50. Wang L et al. [Metabolism, transformation
and distribution of Coptis chinensis total alkaloids in rat]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2010 Aug;35(15):2017-20.
51.
Wang H. et al. The Antihyperglycemic Effects of
Rhizoma Coptidis and Mechanism of Actions: A Review of Systematic Reviews and
Pharmacological ResearchBiomed Res Int. 2014; 2014:
798093.
52. Wang J. et al. [Exploring
the mechanism of rhizoma coptidis in
treating type II diabetes mellitus based
on metabolomics by gas chromatography-mass spectrometry]. Se Pu. 2012
Jan;30(1):8-13.
53. Wu J.et al. Coptisine from Coptis
chinensis inhibits production of inflammatory mediators in
lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 murine macrophage cells. Eur J
Pharmacol. 2016 Jun
5;780:106-14.
54.
Wu H.et al. [Effects of alkaloids from coptidis rhizoma on
blood lipid metabolism and low-denstity lipoprotein receptor mRNA in golden
hamsters]. Zhongguo Zhong Yao Za Zhi. 2014 Jun;39(11):2102-5.
55.
Монографии ВОЗ о лекарственных растениях, широко используемых
в Новых независимых государствах (ННГ). Всемирная
организация здравоохранения, 2010
г . C.75-92. ISBN 978 92 4 459772 9.
Comentarii
Trimiteți un comentariu